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奧林巴斯顯微鏡，普通光學透鏡系統的缺陷（畸變）

顯微鏡等光學儀器的透鏡扭曲的形象的錯誤產生的球面透鏡表面的幾何形狀的缺陷（通常稱為“像差”）與由各種機制所困擾。有三個主要的來源的非理想透鏡作用（錯誤），在顯微鏡觀察。透鏡錯誤的三個主要類別，與波陣面，并相對于焦平面的顯微鏡的光學軸的方向。這些包括如色差和球面像差的光軸上透鏡的錯誤，主要離軸彗差，像散表現為錯誤，和像場彎曲。第三類的像差，在立體顯微鏡的變焦透鏡系統，常見的是，其中包括兩個桶形畸變和

2020-09-04

奧林巴斯顯微鏡：熒光顯微鏡解剖式講解

到其他模式基于宏觀上的試樣的功能，如相位梯度，光的吸收，和雙折射的光學顯微鏡相比，能夠僅僅基于熒光發射性能的一個單一的分子種類的分布成像的熒光顯微鏡。因此，用熒光顯微鏡，與特定的熒光基團標記的胞內組分的精確位置進行監測，以及其相關聯的擴散系數，傳輸特性，以及與其它生物分子相互作用。此外，在熒光顯著的反應，以本地化的環境變量可以調查了pH值，粘度，折射率，離子濃度，膜電位，和在活細胞和組織中的極性溶

2020-09-04

奧林巴斯顯微鏡：熒光和相襯的組合

光漂白的影響減到最小，熒光顯微鏡可以不破壞與其他技術相結合的熒光染料，如微分干涉相差（DIC），霍夫曼調制對比度（HMC），傳送暗場照明，相位相反的。我們的想法是找到一個感興趣的具體領域使用非破壞性的對比度增強技術，然后在一個標本，沒有搬遷的標本，在顯微鏡切換熒光模式。這種類型的一個典型的實驗的結果示于圖1。圖1（a）示出了使用相位對比光學成像的3T3成纖維細胞的單層組織培養。細胞行成立由美國國立

2020-09-04

尼康顯微鏡：共聚焦成像模式

共聚焦顯微鏡的主要應用是在厚的部分的各種各樣的標本類型的改進的成像。共焦的方法的結果的能力，通過試樣序列在高分辨率圖像的各個光學部分的優點。一些使用不同的成像方式，全部依靠的光學部分，其基本形象單位。單光學部分光學部分是圖像的基本單位，在激光共聚焦顯微鏡方法。數據可以收集固定和染色標本的單，雙，三，或多個波長的照明模式，并從多個標記的標本采集的圖像將在注冊與對方（如果有足夠的校正色差物鏡像差被使用

2020-09-04

尼康顯微鏡：活細胞顯微漂移校正焦點

直到20世紀80年代末，大多數生命科學的研究生物的結構復雜的細節，捕捉各種使用固定和染色標本（實際上，非生物）的細胞學特征的單一快照。然而，在過去的幾十年中，在生物科學和醫學的研究已經在很大程度上轉移了重點調查浩大的時間尺度上，從幾毫秒到幾小時不等的生命系統的分子，細胞和整個生物體水平上發生的動態過程。過渡到活細胞成像的司機已經先進的顯微儀器和更敏感的數碼相機的發展，以及新的合成和基因編碼的熒光基

2020-09-04

奧林巴斯顯微鏡：熒光和DIC的組合

光漂白的影響減到最小，熒光顯微鏡可以不破壞與其他技術相結合的熒光染料，如微分干涉相差（DIC），霍夫曼調制對比度（HMC），傳送暗場照明，相位相反的。我們的想法是找到一個感興趣的具體領域使用非破壞性的對比度增強技術，然后在一個標本，沒有搬遷的標本，在顯微鏡切換熒光模式。這種類型的一個典型的實驗的結果示于圖1。圖1（a）示出的大鼠視網膜視神經神經節組織薄截面使用微分干涉對比成像。顯微照片，圖1（b）

2020-09-04

奧林巴斯顯微鏡：DIC顯微鏡的基本概念

活細胞等透明，未染色的標本往往是難以觀察到，在傳統的明照明下使用全孔徑和分辨率的顯微鏡的物鏡和聚光系統。，首先在20世紀30年代開發的釉澤尼克相襯，經常使用這些具有挑戰性的標本圖像，但該技術受到暈文物，被限制到非常薄的樣品準備，不能利用充分聚光鏡和物鏡孔。基本差干涉對比（DIC）的系統，在1955年首次由Francis史密斯設計，兩個渥拉斯頓棱鏡附加的，一個聚光鏡的前焦平面的變形的偏振光顯微鏡物鏡

2020-09-04

尼康顯微鏡：多色共聚焦顯微鏡的光學像差和物鏡選擇

優化的設計簡化了激光共聚焦顯微鏡的程度上，它已經成為一個標準的細胞生物學研究工具。然而，激光共聚焦顯微鏡變得更加強大，他們也變得更加苛刻的光學元件的。事實上，導致圖像質量的細微瑕疵廣角鏡的光學像差可以產生毀滅性的影響，在激光共聚焦顯微鏡。不幸的是，通常是隱藏的嚴格的光學要求，激光共聚焦顯微鏡的光學系統，保證了一個清晰的圖像，即使在顯微鏡是表現不佳。光學制造商提供了廣泛的顯微鏡物鏡，分別為特定應用設

2020-09-04

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