細胞-奧林巴斯顯微鏡|奧林巴斯金相顯微鏡|工業顯微鏡|生物顯微鏡|倒置顯微鏡|上海普赫光電科技有限公司官網-第18頁

徠卡顯微鏡：相襯-使未染色相對象可見

相襯是使未染色的相位對象（例如，扁平細胞）在光學顯微鏡下可見的光學對比度的技術。出現在明不起眼的和透明的細胞可以被視為在高對比度和豐富的細節相襯顯微鏡。使用圖像形成的相移相對象引起的相移的標本的光通過。因為只有振幅位移（強度差異）對于人眼或光電檢測器是可見的，染色的標本介導的振幅移位和通過的光的強度的差異。許多染色試劑的活細胞是有毒的，但是。相襯顯微鏡提供了一個可以使用的光程長度的差異所造成的相移

2020-09-04

尼康顯微鏡：在光學顯微鏡上的創新

所有的科學工具，有可能沒有更多的思考和勞動投入比光鏡下改善。它在過去的幾個世紀的發展，推動了科學家們希望較小，較暗，（圖1）和組織比以往任何時候都更深處的現象，觀察和測量。今天的改進的顯微鏡所產生的圖像的一個例子，提出如圖1所示，其示出了數字方式捕獲的多色一個Eclipse E600顯微鏡使用CFI60 40X的熒光物鏡和尼康的新的地塞米松1200數碼相機拍攝的組織培養細胞的熒光圖像。一個世紀前，

2020-09-04

徠卡顯微鏡：微分干涉對比結構(DIC)

微分干涉對比一步一步的指導最優DIC設置現場檢查未染色的生物標本，經常遭受來自貧困的對比度，因此能見度不良的標本。厚的標本，如大腦切片，特別注意到以上的淺灰色，而不是單細胞結構。這些標本染色可以幫助提高對比度，但一般染色細胞殺死他們，由于固定過程。在顯微鏡的歷史中，已經開發了一些對比方法，以提高對比度不破壞細胞。所有這些對比方法都有自己的長處和自己的短處。在20世紀50年代GEORGES諾馬斯基開

2020-09-04

奧林巴斯顯微鏡：人體工程學的設計

走進繁忙的實驗室后，這是不尋常看到坐在書顯微鏡，在奇數角度傾斜，搖搖欲墜的支持，否則在各種姿勢，以滿足他們的用戶。顯微鏡已經歷了一個了不起的進化，因為他們在17世紀初發明，但大多數新的發展和改進，已經在該地區的對比度增強配件和顯微鏡的光學列車。雖然可用性的問題已經采取了后座過去400年的光學性能，他們還沒有被完全無視的顯微鏡。早在19世紀30年代，在他的傷寒論光學大衛布魯斯特爵士指出，“顯微鏡觀測

2020-09-04

徠卡顯微鏡：激光顯微切割的原理

組織學和生物樣本中的異質性，往往需要在分析之前，可以進行從周圍組織中的具體的單個細胞或細胞群體的隔離。激光顯微切割是一種高選擇性的樣品制備方法，DNA，RNA和蛋白質分析。它是精確的分離技術，用聚焦的激光束的樣品和組織的顯微鏡操控。激光顯微切割的原則要進行顯微切割，直立或倒置顯微鏡的激光被耦合到。選定的區域或什至是單個細胞，然后通過移動聚焦激光束沿其輪廓上切。此過程保證溫柔試樣的處理 - 特別是

2020-09-04

徠卡顯微鏡：熒光定量

眼見為實-測量知道。這個方程反映在14 個世紀科學的發展，從自然哲學到現代科學同樣適用于熒光成像和生物科學技術。顯微鏡生成圖像不僅用于說明，但也量化。更先進的技術使用照明模式（無圖像形成）或不會產生形象可言-但仍然是顯微技術。這些F-技術正變得越來越重要，在當前生物科學。的擾動和松弛：FRAP和FPA一個非常著名的化學和物理的方法是放松方法。測量的信號-在我們的例子中的熒光強度-平衡常數。-作為一

2020-09-04

徠卡顯微鏡：全內反射熒光顯微鏡（TIRF）

全內反射熒光（TIRF）是一種特殊的技術，在20世紀80年代初在安阿伯市密歇根大學的丹尼爾·阿克塞爾羅德在熒光顯微鏡。全內反射熒光顯微鏡提供的圖像具有出色的高軸向分辨率低于100納米。這允許與膜相關的過程的觀察。全內反射熒光顯微鏡它允許靠近的玻璃/水（或玻璃/試樣）接口的熒光分子成像。這是通過采用的漸逝波通過交付的弧光燈，發光二極管（LED）或激光的光激發的熒光基團，而不是直接照明。如果入射的光

2020-09-04

奧林巴斯顯微鏡：纖維的FISH（熒光原位雜交）

這個術語是指纖維的FISH的普遍做法進行準備延長染色質纖維的熒光原位雜交（FISH）。映射還通過進行FISH調查，在染色體上的DNA片段，在幾百萬個堿基對的距離之內的信號彼此由于多方面的結構在中期染色體的DNA鏈是無法區分的。染色體信號的分辨率提高了，如果之前使用它們進步充分冷凝。我們可以做些什么，當我們要映射多個相鄰的DNA克隆嗎？創建地圖規模的一個堿基對整個基因組DNA序列的特性，將解決這個問

2020-09-04

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